Parasites of birds and mammals in captivity in Pernambuco state, Brazil

Pesquisa Veterinária Brasileira

Silva, Silvia Gabriela Nunes da¹  Santos, Pauline Marie de Souza¹  Fonseca, Cristina Farias da²  Oliveira, Jaqueline Bianque de¹ 

[1] Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, Brazil;Instituto Brasileiro de Meio Ambiente e Recursos Naturais, Recife, Brazil

关键词:  Gastrointestinal parasites;    ectoparasites;    control;    biodiversity;    ex situ conservation;   

DOI  :  10.1590/S0100-736X2015000900004

来源: Colegio Brasileiro de Patologia Animal-CBPA

【 摘 要 】

:Wild animals are host to a variety of parasites that may interfere in their ex situ conservation. The objective of this study was to identify gastrointestinal parasites (GP) and ectoparasites of animals of Centro de Triagem de Animais Silvestres (CETAS) of Instituto Brasileiro de Meio Ambiente e Recursos Renováveis (IBAMA) in Recife/Pernambuco, Brazil, and to determine the aspects of captivity management that may be related to the parasites identified. We collected ectoparasites and fecal samples from 223 birds and mammals, which were processed by direct smear, flotation and sedimentation methods. Overall, helminthes and/or protozoa were detected in 91 (40.8%) fecal samples of 64 (70.3%) birds and 27 (29.7%) mammals. Capillaria sp., Ascaridida and Spirurida eggs and Eimeria sp. oocysts were found in fecal samples of birds, while eggs of Trichuris trichiura, Strongyloides sp., Toxocara canis, Ancylostoma sp., Strongylida and Coccidia oocysts were detected in fecal samples of mammals. Ectoparasites identified in birds were Colpocephalum turbinatum, Kurodaia (Kurodaia) fulvofasciata, Halipeurus sp., Naubates sp., Saemundssonia sp., Austromenopon sp., Paragoniocotes sp., Brueelia sp., Myrsidea sp. and Pseudolynchia sp. In mammals, the ectoparasites identified were Rhipicephalus sanguineus, Amblyomma varium, A. calcaratum, A. nodosum, Ornithodoros talaje and Ctenocephalides felis felis. A. calcaratum e O. talaje are presented for the first time in Pernambuco state and T. tetradactyla is reported as a new host of O. talaje. No animal presented clinical signs due to parasitic infection/infestation. Zoonotic parasites like T. trichiura, Strongyloides sp., T. canis and Ancylostoma sp. were identified in non-human primates and carnivores. Poor structural and sanitary conditions of CETAS-PE are related to the parasites identified in this study and should be taken into account for the adoption of appropriate control measures. The results of this study will contribute significantly to the conservation of wildlife in CETAS-PE and health of the professionals responsible for maintaining these animals.Index Terms: Gastrointestinal parasites; ectoparasites; control; biodiversity; ex situ conservationIntroduçãoEstima-se que cerca de 38 milhões de animais sejam retirados anualmente da natureza por traficantes (Renctas 2001) e que esta atividade ilegal movimente cifras em torno de US$ 10 bilhões/ano em todo o mundo (Pagano et al. 2009). Recife e Petrolina (PE), Itabaiana (SE), Salvador, Feira de Santana e Paulo Afonso (BA), Crato (CE) e Picos (PI) são as principais cidades envolvidas no tráfico de animais silvestres na região Nordeste do Brasil (Pagano et al. 2009). Os Centros de Triagem de Animais Silvestres (CETAS) do Instituto Brasileiro de Meio Ambiente e Recursos Naturais Renováveis (IBAMA), foram criados com o objetivo principal de receber e manter animais silvestres (oriundos de apreensões realizadas pelos órgãos ambientais, entrega voluntária e resgate) até que estes possam ser transferidos para um zoológico ou criadouro cadastrado, ou então quando o processo de reabilitação possibilite a reintrodução do animal na natureza (Brasil 2003).Os animais silvestres são hospedeiros de uma grande variedade de parasitos, que podem atuar como oportunistas ou como agentes primários de doença (Freitas et al. 2001 e 2002a, Catão-Dias 2003, Godoy & Cubas 2011, Oliveira et al. 2011, Santos et al. 2011). Segundo Daszak et al. (2000), os parasitos patogênicos podem representar uma ameaça para os programas de manejo e recuperação de populações animais, o que assume particular importância para espécies ameaçadas. Neste sentido, as infecções parasitárias são uma das principais doenças que acometem animais silvestres em cativeiro, estando a morbidade e mortalidade das infecções e/ou infestações parasitárias dependente de variáveis tais como a espécie de parasito e a carga parasitária, estado nutricional, imunocompetência e condições fisiológicas do hospedeiro (Catão-Dias 2003, Godoy & Cubas 2011). Por isso, a identificação da fauna parasitária é exigida em protocolos de reintrodução (UICN 1998, Felasa 1999) e na rotina clínica de animais silvestres (Freitas et al. 2001, 2002a, Deem et al. 2008, Godoy & Cubas 2011, Oliveira et al. 2011, Santos et al. 2011). Deve-se, também, considerar o potencial zoonótico de alguns parasitos (Daszak et al. 2000, Freitas et al. 2001, Sibaja-Morales et al. 2009). Desta maneira, o objetivo deste estudo foi identificar os parasitos gastrointestinais (PGI) e ectoparasitos dos animais silvestres abrigados no Centro de Triagem de Animais Silvestres (CETAS) do Instituto Brasileiro de Meio Ambiente e Recursos Naturais Renováveis (IBAMA) de Recife, Pernambuco, além de determinar os aspectos do manejo em cativeiro que possam estar relacionados com os parasitos identificados.Material e MétodosO estudo foi realizado, no período de setembro de 2012 a fevereiro de 2013, no CETAS do Recife, localizado no bairro de Casa Forte, na cidade do Recife, Pernambuco. Fizeram parte do estudo tanto os animais de ingresso recente quanto aqueles que já estavam abrigados no CETAS há algum tempo. Os animais eram oriundos de apreensões e resgates realizados por órgãos ambientais, assim como por entrega voluntária por parte da população. Para a maioria dos animais analisados não havia registro de sua origem.As amostras fecais foram coletadas quinzenalmente, mas cada animal só foi amostrado uma única vez e, para nenhum deles, havia registro de tratamento antiparasitário prévio. As amostras foram acondicionadas em recipientes plásticos identificados e transportadas em caixas isotérmicas com gelo para o Laboratório de Parasitologia (LAPAR) do Departamento de Biologia da Universidade Federal Rural de Pernambuco (UFRPE). As amostras foram mantidas sob a refrigeração até seu processamento. Para o diagnóstico de parasitos gastrointestinais (PGI), as amostras foram processadas pelos métodos: microscopia direta, flutuação de Sheather modificado (com solução hipersaturada de açúcar) (Sibaja-Morales et al. 2009, Santos et al. 2011) e de sedimentação espontânea (Freitas et al. 2001, 2002a). A identificação dos oocistos e ovos de PGI seguiu a descrição morfológica de Zajac & Conboy (2006), Urquhart et al. (2008) e Kouassi et al. (2015).Os animais foram sistematicamente inspecionados (com o auxílio de uma lupa) e os ectoparasitos foram removidos e acondicionados em frascos contendo etanol 70°GL para posterior identificação no LAPAR.Os piolhos foram clarificados em uma bateria de fenol-xilol (Freitas et al. 2002b, Melo et al. 2012) e montados entre lâmina e lamínula com resina sintética permanente (Entellan®). Para identificação, foram utilizados a chave de Price et al. (2003) e artigos científicos especializados. Os carrapatos foram identificados em microscópio estereoscópico, utilizando as chaves de Aragão & Fonseca (1961), Barros-Battesti et al. (2006) e Martins et al. (2010).As pulgas foram clarificadas com hidróxido de potássio (KOH) a 10% e montadas entre lâmina e lamínula com resina sintética permanente (Entellan®) (Freitas et al. 2002b, Oliveira et al. 2011). A identificação seguiu os padrões morfológicos descritos por Linardi & Guimarães (2000).As prevalências dos PGI foram calculadas de acordo com Bush et al. (1997).O escore corporal dos animais foi classificado como magro, bom e obeso (Greenacre 2003, Haire 2003). Além disto, a apresentação de sinais clínicos como apatia, perda de peso, diarreia, vômito, entre outros, foi utilizada para a avaliação do estado de saúde dos animais estudados. As informações pertinentes ao manejo sanitário dos animais e das instalações foram prestadas pelos profissionais responsáveis e também levantadas a partir do acompanhamento diário da rotina do CETAS.ResultadosEm total, foram coletadas 223 amostras fecais, das quais 135 (60,3%) eram de aves e 88 (39,5%) de mamíferos. Em 91 (40,8%) amostras foram encontrados ovos e/ou oocistos de nematódeos e/ou protozoários, sendo 64 (70,3%) de aves e 27 (29,7%) de mamíferos. No Quadro 1, são apresentadas as prevalências dos PGI por cada grupo de animais analisados. Eimeria sp. (89,1%), Ascaridida (67,2%), Capillaria sp. (39,1%) e Spirurida (15,6%) foram os PGI identificados nas amostras fecais das aves, enquanto Strongylida (92,6%), Coccídios (74,1%), Trichuris trichiura (70,4%), Strongyloides sp. (70,4%), Toxocara canis (3,7%) e Ancylostoma sp. (3,7%) foram os PGI identificados nos mamíferos. Aves da ordem Accipitriformes e mamíferos da família Cebidae apresentaram maior diversidade de PGI. Os PGI identificados e seus respectivos hospedeiros são apresentados no Quadro 2. Quadro 1: Prevalência de parasitos gastrointestinais em aves e mamíferos do Centro de Triagem de Animais Silvestres (CETAS) do Estado de Pernambuco, setembro de 2012 a fevereiro de 2013 N = número de amostras coletadas; P = número de amostras com parasitos gastrointestinais; % = prevalência.Quadro 2: Parasitos gastrointestinais detectados em amostras fecais de aves e mamíferos do Centro de Triagem de Animais Silvestres (CETAS) do Estado de Pernambuco, setembro de 2012 a fevereiro de 2013 N = número de espécimes examinados; P = número de espécimes com parasitos gastrointestinais. Carrapatos, piolhos, pulgas e moscas hematófagas foram os ectoparasitos coletados nas aves e mamíferos estudados (Quadro 3). A diversidade de ectoparasitos foi maior nas aves. Os piolhos mastigadores identificados em aves foram: Colpocephalum turbinatum, Kurodaia (Kurodaia) fulvofasciata, Austromenopon sp., Myrsidea sp. (Amblycera, Menoponidae); Halipeurus sp., Naubates sp., Saemundssonia sp., Paragoniocotes sp. e Brueelia sp. (Ischnocera, Philopteridae) (Quadro 3). Moscas hematófagas da espécie Pseudolynchia sp. foram coletadas unicamente em Ardea alba (garça-branca-grande) (Quadro 3). Quadro 3: Ectoparasitos de aves e mamíferos do Centro de Triagem de Animais Silvestres (CETAS) do Estado de Pernambuco, setembro de 2012 a fevereiro de 2013  Nos mamíferos, os ectoparasitos identificados foram os carrapatos Rhipicephalus sanguineus, Amblyomma varium, A. calcaratum, A. nodosum (Acari, Ixodidae) e Ornithodorostalaje (Acari, Argasidae), além da pulga Ctenocephalides felis felis (Siphonaptera, Pulicidae).A maioria dos animais apresentava boa condição corporal e nenhum dos animais parasitados apresentou sinais clínicos associados com a infecção e/ou infestação. No entanto, as condições estruturais e sanitárias do CETAS-PE foram avaliadas como deficientes e precárias, guardando relação direta com os parasitos identificados.DiscussãoA prevalência de parasitos relatada no presente estudo é considerada como uma ameaça à saúde dos animais (Daszak et al. 2000), uma vez que os PGI e os ectoparasitos podem atuar como oportunistas ou como agentes primários de doença (Freitas et al. 2001 e 2002a, Catão-Dias 2003, Godoy & Cubas 2011, Oliveira et al. 2011, Santos et al. 2011). A maioria dos PGI identificados em aves e mamíferos são monoxenos, os quais são mais frequentes devido à maior facilidade para infectar seus hospedeiros (Freitas et al. 2002a, Urquhart et al. 2008, Sibaja-Morales et al. 2009, Santos et al. 2011), enquanto os parasitos heteroxenos são transmitidos por hospedeiros intermediários (normalmente invertebrados) (Urquhart et al. 2008). O cativeiro desfavorece a infecção por uma grande variedade de grupos/espécies de parasitos, uma vez que as fontes de infecção são limitadas, ao contrário do que ocorre em vida livre, onde as fontes de infecção são mais abundantes (Freitas et al. 2001, Sibaja-Morales et al. 2009, Santos et al. 2011). Apesar disto, aves da ordem Accipitriformes e mamíferos da família Cebidae apresentaram maior diversidade de PGI, talvez por terem ingressado parasitados no CETAS e não terem sido posteriormente tratados.O maior número de amostras fecais de aves se deve ao fato de que, tanto em âmbito nacional como regional, as aves representam cerca de 82% dos animais mantidos em zoológicos e centros de triagem (Pagano et al. 2009). As aves silvestres albergam uma grande diversidade de parasitos, sendo mais frequentes os nematódeos dos gêneros Capillaria (ordem Enoplida), Ascaridia e Contracaecum (ordem Ascaridida), Physaloptera, Synhimantus, Tetrameres e Procyrnea (ordem Spirurida), além dos protozoários do grupo dos Coccídios (gêneros Eimeria e Isospora) (Vicente et al. 1995, Freitas et al. 2002a, Silva et al. 2009, Santos et al. 2011, Melo et al. 2012 e 2013). No presente estudo, Capillaria sp., Eimeria sp. e nematódeos das ordens Ascaridida e Spirurida foram detectados unicamente nas fezes de Psittaciformes (Ara ararauna, A. macao, A. chloropterus, Anodorhynchus hyacintinus e Amazona aestiva), Accipitriformes (Rupornis magnirostris e Parabuteo unicinctus) e Falconiformes (Caracara plancus e Mivalgo chimachima), o que também foi registrado por Freitas et al. (2002a) em aves em cativeiro no Parque Estadual Dois Irmãos em Recife, Pernambuco, a partir da análise de amostras fecais. No CETAS de João Pessoa, Paraíba, Melo et al. (2013) descreveram, através de necropsias, o parasitismo pelos nematódeos Ascaridia hermaphrodita e Synhimantus (Synhimantus) rectus em A. aestiva e R. magnirostris, respectivamente. Em aves Strigiformes em cativeiro em Santa Maria, Rio Grande do Sul, Silva et al. (2009) registraram a ocorrência de Capillaria sp., Strongylida e Coccídios em amostras fecais, o que difere do presente estudo, onde não foram detectados parasitos nas amostras das aves deste grupo. As técnicas diagnósticas (parasitológico de fezes ou necropsia) e a área geográfica explicam as diferenças encontradas nos mencionados estudos.Os PGI identificados em mamíferos no presente estudo foram também registrados por Freitas et al. (2001) no Parque Estadual Dois Irmãos, Pernambuco. No presente estudo, os primatas não humanos apresentaram uma maior diversidade de PGI (Strongyloides sp., Strongylida, T. trichiura e Coccídios). Estes animais são hospedeiros de duas espécies de Strongyloides: S. stercoralis e S. fuelleborni, ambas com potencial zoonótico. Na ordem Strongylida, o parasitismo por nematódeos dos gêneros Ancylostoma, Molineus, Oesophagostomum e Trichostrongylus foi relatado em primatas não humanos em cativeiro e em vida livre (Vicente et al. 1995, Legesse & Erko 2004, Mbaya & Udendeye 2011, Kouassi et al. 2015); T. trichiura (ordem Enoplida) também foi diagnosticado neste grupo animais (Mbaya & Udendeye 2011). Nematódeos do gênero Trichuris são um dos PGI de maior dificuldade para o controle, o que se deve basicamente a dois fatores: (1) os antihelmínticos são muito eficazes contra os parasitos adultos, mas não contra as larvas, que penetram profundamente na mucosa do ceco, dificultando a exposição ao fármaco; (2) os ovos são muito resistentes às condições ambientais e podem sobreviver por longos períodos, o que favorece a ocorrência de reinfecções constantes (Lindsay & Blagburn 1995, Urquhart et al. 2008). É importante destacar que, assim como os ovos de T. trichiura, os ovos de Capillaria sp., T. canis, os dos Ascarídeos de aves e os oocistos de Coccídios, são bastante resistentes a agentes físicos e químicos, dificultando o controle ambiental (Lindsay & Blagburn 1995, Freitas et al. 2001 e 2002a, Urquhart et al. 2008, Sibaja-Morales et al. 2009, Santos et al. 2011). Em cativeiro, os animais vivem continuamente em gaiolas e/ou recintos contaminados, o que facilita a reinfecção, mesmo que o tratamento antiparasitário seja realizado periodicamente (Freitas et al. 2002a, Santos et al. 2011). No CETAS-PE, os antiparasitários são utilizados unicamente quando os animais manifestam sinais clínicos como apatia, diarreia e perda de peso, o que favorece a manutenção dos parasitos nos animais e no ambiente. Os sinais clínicos relacionados com os PGI são inespecíficos e a maioria das infecções parasitárias é assintomática (Deem et al. 2008, Urquhart et al. 2008, Godoy & Cubas 2011). Portanto, não é recomendável vermifugar os animais unicamente mediante a apresentação de sinais clínicos (Freitas et al. 2001 e 2002a, Deem et al. 2008, Sibaja-Morales et al. 2009, Santos et al. 2011).Mesmo parasitados por PGI considerados como muito patogênicos, como Eimeria sp., T. trichiura, T. canis e Ancylostoma sp., as aves e mamíferos estavam em boa condição física e não apresentavam sinais clínicos associados com a infecção parasitária, o que foi também registrado em outros estudos (Freitas et al. 2001 e 2002a, Sibaja-Morales et al. 2009, Silva et al. 2009, Santos et al. 2011). No entanto, a presença destes PGI deve ser encarada como uma ameaça à saúde dos animais, pois a maioria dos parasitos comporta-se como oportunista, mas em situações de imunocomprometimento, frequentes em ambientes de cativeiro, os animais parasitados podem manifestar sinais clínicos (Freitas et al. 2001 e 2002a, Catão-Dias 2003, Deem et al. 2008, Godoy & Cubas 2011, Santos et al. 2011). Diarreia, emagrecimento, apatia e morte podem ocorrer quando a carga parasitária é elevada (Freitas et al. 2001 e 2002a, Deem et al. 2008, Sibaja-Morales et al. 2009, Santos et al. 2011). A obstrução intestinal provocada pelo nematódeo Ascaridia hermaphrodita foi responsável pela morte de 14 psitacídeos no CETAS de João Pessoa-PB (Melo et al. 2013). Fizeram parte deste estudo, três espécimes de Sapajus flavius (Macaco-prego-galego), os quais estavam parasitados por Strongylida, Strongyloides sp., T. trichiura e Coccídios. Este dado reveste-se de importância uma vez que S. flavius se encontra criticamente ameaçado de extinção (IUCN 2011). Amostras fecais de outras espécies ameaçadas, a exemplo de Amazona vinacea (Papagaio-de-peito-roxo) e Guarouba guarouba (Ararajuba) (UICN 2011), também foram analisadas, mas não foram encontrados PGI nestas aves. O conhecimento sobre a fauna parasitária de animais selvagens é fundamental para os estudos de impactos na saúde, principalmente de espécies ameaçadas (Muniz-Pereira et al. 2009). Neste sentido, o diagnóstico coproparasitológico e o controle de infecções parasitárias devem ser parte da rotina de protocolos sanitários em animais de cativeiro (UICN 1998, Felasa 1999, Freitas et al. 2001, 2002a, Deem et al. 2008, Sibaja-Morales et al. 2009, Santos et al. 2011, Melo et al. 2013). A realização periódica de exames coproparasitológicos é fundamental para orientar médicos veterinários e biólogos sobre a necessidade ou não da utilização de produtos antiparasitários, o que evitará gastos desnecessários e diminuirá também o risco de mortalidade (Deem et al. 2008, Sibaja-Morales et al. 2009, Oliveira et al. 2011, Santos et al. 2011).Os piolhos mastigadores (ordem Mallophaga) foram os ectoparasitos mais frequentes nas aves estudadas, o que difere do estudo realizado por Freitas et al. (2002b) em aves mantidas em cativeiro no Parque Dois Irmãos e em um criatório científico em Recife-PE, onde os ácaros plumícolas foram os ectoparasitos mais frequentes. A pediculose resulta, com frequência, da superlotação nas gaiolas e recintos, mesmo que os piolhos sejam ectoparasitos hospedeiro-específicos (Morishita et al. 2001, Freitas et al. 2002b, Urquhart et al. 2008, Oliveira et al. 2011). Embora nenhuma das aves infestadas apresentasse sintomatologia associada aos ectoparasitos, o conhecimento sobre a infestação por piolhos mastigadores em aves reveste-se de importância, uma vez que a pediculose pode causar transtornos como prurido, inquietação, perda do apetite, além de danos às penas e à pele (Freitas et al. 2002b, Oliveira et al. 2011). Por isso, medidas de caráter preventivo devem ser instituídas para minimizar os efeitos deletérios do ectoparasitismo (Morishita et al. 2001, Oliveira et al. 2011).Moscas do gênero Pseudolynchia (Diptera, Hippoboscidae) parasitam vários grupos de aves e se destacam por serem hematófagas e atuarem como vetores de hemoparasitos do gênero Haemoproteus (Santos et al. 2011), que afetam a saúde das aves parasitadas (Atkinson et al. 2008).De maneira similar ao registrado neste estudo, o carrapato R. sanguineus foi também descrito em Nasua nasua (Quati) no Parque Dois Irmãos e no Parque Zoobotânico Arruda Câmara em João Pessoa-Paraíba (Dantas-Torres et al. 2010), enquanto Galactis cuja (Furão) foi registrado como hospedeiro deste carrapato no CETAS de São Luís-MA (Figueiredo et al. 2010). Esta é a espécie de carrapato de mais ampla distribuição geográfica no mundo, sendo conhecida popularmente como "carrapato-vermelho-do-cão" (Barros-Battesti et al. 2006, Dantas-Torres et al. 2010). É um ectoparasito trioxeno que realiza todas as mudas antes da troca de hospedeiros no ambiente (Urquhart et al. 2008). Carnívoros silvestres, em cativeiro ou que vivem em áreas frequentadas por cães, atuam como hospedeiros deste carrapato (Barros-Battesti et al. 2006). O parasitismo misto por A. nodosum e A. calcaratum em Tamandua tetradactyla (Tamanduá-mirim), conforme relatado no presente estudo, é considerado frequente (Barros-Battesti et al. 2006). Dantas-Torres et al. (2010) registraram o parasitismo por A. nodosum em Myrmecophaga tridactyla (Tamanduá-bandeira) e T. tetradactyla no Parque Dois Irmãos em Pernambuco e no Parque Zoobotânico Arruda Câmara da Paraíba. No CETAS do Maranhão, Figueiredo et al. (2010), reportaram o parasitismo por Amblyomma sp. em T. tetradactyla. Os carrapatos do gênero Amblyomma são também trioxenos (realizam no ambiente todas as mudas para troca de hospedeiros) e as espécies A. nodosum e A. calcaratum parasitam, quase que exclusivamente, tamanduás na fase adulta e aves na fase imatura (larvas e ninfas) (Barros-Battesti et al. 2006, Urquhart et al. 2008).Assim como no presente estudo, o carrapato A. varium foi descrito em Bradypus variegatus (Preguiça-de-três-dedos) no Parque Zoobotânico Arruda Câmara em João Pessoa (Dantas-Torres et al. 2010). Este carrapato é considerado, na fase adulta, como específico de preguiças.Segundo Barros-Battesti et al. (2006), o carrapato O. talaje parasita várias espécies de mamíferos. Este é o primeiro registro de O. talaje em Pernambuco e T. tetradactyla é apresentado como novo hospedeiro deste argasídeo, que passa a maior parte do seu ciclo biológico no ambiente.A pulga Ctenocephalides felis felis foi identificada unicamente em Cerdocyon thous (Cachorro-do-mato), enquanto que no CETAS do Maranhão, o parasitismo por esta pulga foi descrito unicamente em carnívoros da espécie N. nasua (Figueiredo et al. 2010).É importante destacar que 95% da população de carrapatos e pulgas se desenvolve no ambiente, sendo de fundamental importância o controle ambiental destes ectoparasitos para evitar a propagação dos mesmos para outros animais, pois estes artrópodes se destacam por sua baixa especificidade de hospedeiros (Urquhart et al. 2008).As precárias condições estruturais e sanitárias do CETAS-PE guardam relação direta com os parasitos identificados neste estudo e devem ser levadas em consideração para a adoção de medidas adequadas de controle. Desafortunadamente, as instalações do CETAS-PE não são adequadas para receber a grande quantidade de animais que, diariamente, são recebidos nesta instituição, o que tem resultado em superlotação das gaiolas e/ou recintos. Em condições de superlotação, a proximidade entre os animais favorece a transmissão tanto de PGI quanto de ectoparasitos. Além disto, devido ao grande fluxo de animais apreendidos do tráfico, algumas vezes, os animais albergados há mais tempo são retirados das gaiolas e/ou recintos e transferidos pra outros locais, para dar lugar aos animais de ingresso recente, favorecendo a transmissão de PGI monoxenos (os mais prevalentes neste estudo). Por questões de logística, a higienização das gaiolas e/ou recintos se restringe unicamente à remoção dos resíduos gerados pelos animais (fezes e restos de alimentos). Evidentemente, este manejo sanitário deficiente favorece a manutenção dos parasitos no ambiente, principalmente daqueles mais resistentes. Neste sentido, a limpeza e desinfecção sistemática de gaiolas e/ou recintos deve ser priorizada, utilizando principalmente a vassoura de fogo para a destruição de ovos e oocistos de PGI, além da remoção e troca do substrato do piso (Sibaja-Morales et al. 2009). Além destas medidas, a utilização de acaricidas/inseticidas no ambiente é fundamental para o controle das fases ambientais dos carrapatos e das pulgas.A partir do diagnóstico dos parasitos apresentados, pretende-se contribuir não só com a saúde dos animais silvestres mantidos no CETAS-PE, mas também com a saúde das pessoas envolvidas diretamente com o manejo dos mesmos e com a saúde ambiental. Neste sentido, o diagnóstico de parasitos com potencial zoonótico tais como T. trichiura, Strongyloides sp., T. canis e Ancylostoma sp., merece destaque não somente porque são um risco para a saúde dos animais, mas também porque podem afetar severamente a saúde das pessoas que trabalham diretamente com estes animais, tais como veterinários, biólogos, zootecnistas, tratadores, entre outros (Freitas et al. 2001, Sibaja-Morales et al. 2009, Public Health Agency of Canada, 2011). Strongyloides fuelleborni e S. stercoralis também apresentam potencial zoonótico, já que são descritos em humanos e primatas não humanos (Mbaya & Udendeye 2011, Viney & Lok 2011, Mafuyai et al. 2013, Kouassi et al. 2015). Infestações por carrapatos dos gêneros Amblyomma e Ornithodoros (Barros-Battesti et al. 2006, Dantas-Torres et al. 2010) são frequentes em humanos, provocando reações que variam desde prurido e lesões na pele até distúrbios sistêmicos (Reck et al. 2014). Pouco se conhece sobre o risco de transmissão de doenças por estes carrapatos em Pernambuco (Dantas-Torres et al. 2010). Estes resultados pressupõem a adoção de medidas de biossegurança para diminuir o risco zoonótico representado pelos PGI e ectoparasitos diagnosticados.Os resultados obtidos aportam informações relevantes sobre a fauna parasitária de aves e mamíferos em cativeiro no Brasil. Os carrapatos A. calcaratum e O. talaje são registrados pela primeira vez em Pernambuco e T. tetradactyla é apresentado como novo hospedeiro de O. talaje. A elevada prevalência de PGI é uma ameaça à saúde dos animais e das pessoas envolvidas no cuidado diário com os mesmos, uma vez que foram diagnosticados tanto PGI muito patogênicos para os animais como com potencial zoonótico. As precárias condições estruturais e sanitárias do CETAS-PE estão relacionadas com os parasitos identificados neste estudo e devem ser levadas em consideração para a adoção de medidas adequadas de controle. Os resultados deste estudo contribuirão de maneira significativa para a conservação de animais selvagens no CETAS-PE e para a saúde dos profissionais responsáveis pela manutenção destes animais.AgradecimentosAo CETAS-PE por fornecer a licença para a realização das coletas e a todos os funcionários deste órgão pelo apoio técnico e logístico.ReferênciasAragão H. & Fonseca F. 1961. Notas de Ixodologia. VIII. Lista e chave para os representantes da fauna ixodológica brasileira. Mem. Inst. Oswaldo Cruz 59:131-148. [ Links ] Atkinson C.T., Thomas N.J. & Hunter D.B. 2008. Parasitic diseases of wild birds. Blackwell, Iowa. 310p. [ Links ] Barros-Battesti D.M., Arzua M. & Bechara G.H. 2006. Carrapatos de Importância Médico-Veterinária da Região Neotropical: um guia ilustrado para identificação de espécies. Vox/ICTTD-3/Butantan, São Paulo. 223p. [ Links ] Brasil - Instituto Brasileiro do Meio Ambiente e dos Recursos Naturais Renováveis 2003. Instrução Normativa nº 3 de 27 de maio de 2003. 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